в чем содержится защитное деянье сахаров на протоплазму

Ответ:

У растений, не владеющих морозоустойчивостью, при низких отрицательных температурах в результате замерзания свободной воды в клеточных стенках и межклетниках появляется лед, который оказывает водоотнимающее и механическое деяние. В результате механического действия происходит сдавливание клеток и разрыв клеточных структур кристаллами льда, после оттаивания из покоробленных клеток ткани вытекает клеточный сок. В итоге водоотнимающего деянья наблюдается обезвоживание и коагуляция коллоидов протоплазмы.

Морозоустойчивые растения имеют разные структурные и физиологические механизмы адаптации к низким отрицательным температурам. К структурным механизмам адаптации относят крупные межклетники, плотные покровные ткани, к физиологическим низкое содержание свободной воды, понижение интенсивности ростовых процессов, переход в состояние покоя, скопление веществ не чувствительных к низким температурам (сахаров, пектиновых веществ, жиров). Главнейшим свойством морозоустойчивых растений является их способность накапливать осмотически активные вещества сахара. Так в узлах кущения озимых культур в конце периода закаливания может скапливаться до 25 % сахаров на сухую массу.

Защитную роль сахаров можно следить и в модельных опытах с растениями или тканями, не владеющими морозоустойчивостью. Для этой цели их замораживают в смесях сахарозы различной концентрации. О степени повреждения тканей судят по изменению окраски внешнего раствора в связи с вытеканием клеточного сока (при наличии в нем антоцианов) либо по возможности клеток плазмолировать при помещении их в гипертонический раствор соли.

Цель работы. Найти воздействие концентрации сахарозы на состояние тканей корнеплода столовой свеклы при замораживании.

Ход работы. Из корнеплода столовой свеклы пробочным сверлом поперечником 810 мм делают высечку длиной 23 см. Помещают её на стеклянную пластинку и с поддержкою ланцета (либо лезвия) делают 69 тонких срезов, применимых для микроскопии. Срезы переносят в фарфоровую чашечку с водопроводной водой для удаления клеточного сока из порезанных клеток.

В первую пробирку наливают 5 мл воды (контроль). Во вторую 5 мл 1,0 М раствора сахарозы, во третью 5 мл 0,5 М раствор сахарозы (готовят путем смешивания 1,0 М раствора сахарозы и воды в соотношении 1:1). В каждую пробирку помещают по 23 микроскопичных среза. Пробирки этикетируют и помещают в охладительный раствор, который готовят в фарфоровом стакане путем смешивания трех долей снега или размельченного льда и одной доли соли. Для определения температуры охладительной смеси в нее сразу с пробирками помещают термометр. Через 3035 мин пробирки переносят в стакан с водопроводной водой для оттаивания. Затем содержимое пробирок перемешивают, отмечают интенсивность окрашивания наружного раствора и определяют количество плазмолируемых клеток в каждом варианте. Для этого, начиная с 1 М раствора, содержимое пробирок выливают в фарфоровую чашечку, обретают микроскопичный срез, помещают его на предметное стекло в каплю 1 М раствора NаCl, покрывают покровным стеклом и просматривают в микроскоп при малом увеличении. Определяют количество плазмолизированных клеток, имеющих вид обособленных бардовых пятнышек на ясном фоне. Результаты наблюдений заносят в табл. 46.

Разъясненье: